Biologisk mikroskop på volumet av vevsblokk
Et biologisk mikroskop med en kondensator kan flytte kondensatoren opp og ned for å gjøre lysstyrken moderat, og kan også endre blenderåpningen til den variable lysanalysatoren for å oppnå en moderat lysstyrke på 9b. Hvis lyset er i solen, kan kondensatoren heves passende, og blenderåpningen til den variable optiske støyen kan forstørres passende. Hvis lyset er for sterkt, kan kondensatoren senkes hensiktsmessig, og blenderåpningen i krysset kan reduseres hensiktsmessig. Hvis du fortsatt føler deg blendende i dette tilfellet, kan du velge et passende filter og plassere det på braketten under kondensatoren. Denne tussahen kan få en lysstyrke som tilfredsstiller deg. Selvfølgelig er det nødvendig å få erfaring etter en viss periode med øvelse med å justere øvre og nedre posisjoner til kondensatoren for å endre blenderstørrelsen til den optiske avlesningen og velge passende filtre.
Et svært viktig problem med biomikroskop er at innholdet av 65 elementer i hver del etter frysetørking og harpiksinnstøping (FD) og frysetørking må håndteres nøye, for ikke å skade cellene som skal observeres og analyseres. Fordi røntgenmikroanalyse ikke bare involverer mange trinn, men også koster mye, er det svært beklagelig å trekke en feil konklusjon dersom cellene som analyseres er skadede celler eller døde celler etter langvarig og flertrinnsbehandling. For eksempel har myokardceller separert ved kollagenasebehandling to former, den ene er lang stang og den andre er rund. Sistnevnte er en døende celle som blir skadet under celleseparasjon.
Innholdet og fordelingen av elektrolytter i disse to celletypene er svært forskjellige under biologisk mikroskop. Na er svært høyt og K er svært lavt i runde myokardceller, og ca-konsentrasjonen i lineære dendritter er svært høy. Sammenlignet med andre analytiske metoder, er det bevist at høy Na og lav K i sirkulære celler og høy ca i mitokondrier er resultatet av cellemembranskade under celleseparasjon. Kaldfikseringsmetoden til celler og vev er ofte å fikse dem ved først å slukke, og deretter å lagre dem i flytende nitrogen. Slokkefiksering er svært viktig for konserveringseffekten. Levende celler eller friskt vev er rike på vann. Ved bråkjøling er det ofte at delene av celler eller vev som er i direkte kontakt med kryobeskyttelsesmidler (spesielt ved bråkjøling med flytende nitrogen) fryses og fikseres først, og danner dermed et "skall", som hindrer frysing og fiksering av det sentrale del av cellene. Når man gjør røntgenmikroanalyse, finner man derfor ofte ut at det er iskrystaller i sentrum av større celler. For å forhindre at dette skjer, brukes et stoff med et smeltepunkt som er høyere enn flytende nitrogen, men en tørketemperatur lavere enn 806c som kjølemiddel. Det finnes mange slike stoffer, men det lettest tilgjengelige er konsentrert propan (kokepunkt-42．120c, smeltepunkt-187．10c, molekylvekt-44.1), som har raskeste kjølehastighet. Men dens ulempe er brennbarhet.
Det biologiske mikroskopet kan sette muskelfiberen på en spesiell ramme, og når muskelfiberen trekker seg sammen til en viss fase og må fikses, startes dysen umiddelbart, slik at den flytende propanen sprayes på muskelfiberen for å slukke og fikse den. Deretter tas muskelfibrene ut sammen med stativet og legges i flytende nitrogen. Hvis blodceller eller separerte celler er fiksert, sentrifuger først ved lav hastighet for å konsentrere cellene, overfør cellene til et sølvfarget lite rør med god varmeledningsevne, og legg det lille røret i flytende propan for frysing og fiksering. Ved fiksering av rottebukspyttkjertel i Hall laboratorium ble to stålblokker forhåndskjølt med flytende helium (eller flytende nitrogen), og to kobberblokker ble plassert foran og bak bukspyttkjertelen med tang, slik at tantene ble slukket og fikset. Vev eller celler kan lagres i lang tid etter å ha blitt slukket og fikset og overført til flytende nitrogen.
